ВОЗРАСТНАЯ ДИНАМИКА БИОХИМИЧЕСКОГО ПРОФИЛЯ САМЦОВ И САМОК ПОМЕСЕЙ, ПОЛУЧЕННЫХ ПРИ СКРЕЩИВАНИИ СНЕЖНЫХ И КРАСНЫХ ЛИСИЦ (VULPES VULPES LINNAEUS, 1758)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Динамика биохимических показателей в процессе онтогенеза животных может изменяться под воздействием ряда факторов, таких как пол и возраст. Настоящее исследование направлено на изучение влияния этих факторов, на биохимический профиль у помесных снежно-красных лисиц (n= 20) в возрасте 1.5 и 6 месяцев, полученных в результате скрещивания самцов лисиц снежного цветового типа с самкамикрасных лисиц цветового типа огневка вятская. Работа выполнена на базе ООО “Звероводческое племенное хозяйство “Вятка” (Кировская область). Проведенный анализ выявил, что ведущее влияние на биохимические показатели принадлежит возрасту, который достоверно воздействовал на все 12 исследованных параметров (p< 0.05), включая динамику активности ферментов (АЛТ, АСТ, ЩФ), уровни азотистых соединений, белка, альбумина и холестерина. В то же время половая принадлежность оказывала модулирующий эффект на 8 из 12 показателей, преимущественно в возрасте 1.5 месяцев: половые различия наблюдались в активности ферментов, липидном обмене (α-амилаза, холестерин) и параметрах перекисного окисления липидов (МДА, ЦП, каталаза). Совместное влияние факторов (пол × возраст) было значимым для 10 из 12 показателей, однако к 6 месяцам стабилизация антиоксидантной системы (снижение МДА, рост ЦП и каталазы) свидетельствует о снижении роли пола в формировании биохимического профиля. Таким образом, возраст выступает ключевым фактором онтогенетических изменений, тогда как пол вносит ситуативный вклад, преимущественно на ранних этапах развития. Ген WG, оказывая плейотропное влияние на различные аспекты метаболизма, приводит к тому, что потомство, несущее в себе данный ген, демонстрирует более интенсивный клеточный обмен в раннем онтогенетическом периоде по сравнению с щенками красной лисицы, не имеющих данного гена, что выражается в повышенных значениях АЛТ, АСТ и щелочной фосфатазы, измененном балансе обмена макронутриентов, подтвержденном различиями в уровнях α-амилазы, холестерина, мочевины и креатинина. Это приводит к характерным возрастным изменениям в биохимическом профиле самцов и самок помесей, полученных при скрещивании снежных и красных лисиц.

Об авторах

Ю. А. Березина

Всероссийский научно-исследовательский институт охотничьего хозяйства и звероводства

Автор, ответственный за переписку.
Email: uliya180775@bk.ru

О. Ю. Беспятых

Всероссийский научно-исследовательский институт охотничьего хозяйства и звероводства; Вятский государственный университет

Email: uliya180775@bk.ru

А. С. Сюткина

Всероссийский научно-исследовательский институт охотничьего хозяйства и звероводства

Email: uliya180775@bk.ru

И. А. Плотников

Всероссийский научно-исследовательский институт охотничьего хозяйства и звероводства; Вятский государственный агротехнологический университет

Email: uliya180775@bk.ru

И. И. Окулова

Всероссийский научно-исследовательский институт охотничьего хозяйства и звероводства

Email: uliya180775@bk.ru

И. А. Домский

Всероссийский научно-исследовательский институт охотничьего хозяйства и звероводства

Email: uliya180775@bk.ru

Список литературы

  1. Wacławik P, Grabolus D, Zatoń-Dobrowolska M, Kruszyński
  2. W (2021) Coat colour inheritance in American
  3. mink (Neovison vison): Pedigree analysis. Acta Sci Pol
  4. Zootech 19(4): 33-8.
  5. https://doi.org/10.21005/asp.2020.19.4.04
  6. Thapa PC, Do DN, Manafiazar G, Miar Y (2023) Coat
  7. color inheritance in American mink. BMC Genomics
  8. 24(1): 234.
  9. https://doi.org/10.1186/s12864-023-09348-8
  10. Shevchuk TV (2018) Selection and genetic characteristics
  11. of foxes at cage breeding. Animal Breeding and Genetics
  12. 51: 177–184.
  13. https://doi.org/10.31073/abg.51.24
  14. Баишникова ИВ, Ильина ТН, Илюха ВА, Антонова ЕП,
  15. Морозов АВ (2016) Влияние мутаций, затрагивающих
  16. окраску волосяного покрова, на показатели анти-
  17. оксидантной и пищеварительной систем у лисиц.
  18. Труды Карельского научного центра РАН 6: 26–38.
  19. [Baishnikova IV, Ilyina TN, Ilyukha VA, Antonova EP,
  20. Morozov AV (2016) Effect of mutations affecting hair color
  21. on antioxidant and digestive systems in foxes. Proceedings
  22. of the Karelian Scientific Center of the Russian Academy
  23. of Sciences 6: 26–38. (In Russ)].
  24. https://doi.org/ 10.17076/eb362
  25. Valipour S, Karimi K, Do DN, Barrett D, Sargolzaei M,
  26. Plastow G, Wang Z, Miar Y (2022) Genome-Wide Detection
  27. of Selection Signatures for Pelt Quality Traits and
  28. Coat Color Using Whole Genome Sequencing Data in
  29. American Mink. Genes (Basel) 13(11): 1939.
  30. https://doi.org/10.3390/genes13111939
  31. Прасолова ЛА, Трапезов ОВ (2007) Влияние генов
  32. окраски шерсти на морфологию пигментации во-
  33. лос у американской норки (Mustela vison Schr. L.).
  34. Генетика 43 (7): 982-6. [Prasolova LA, Trapezov OV
  35. (2007) Effect of coat color genes on the hair pigmentaЖУРНАЛ
  36. ЭВОЛЮЦИОННОЙ БИОХИМИИ И ФИЗИОЛОГИИ том 61 № 3 2025
  37. 188 БЕРЕЗИНА и др.
  38. tion morphology in the American mink (Mustela vison
  39. Schr. L.). Genetika 43(7): 982-6. (In Russ)].
  40. Johnson JL, Kozysa A, Kharlamova AV, Gulevich RG, Perelman
  41. PL, Fong HWF, Vladimirova AV, Oskina IN, Trut LN,
  42. Kukekova AV (2015) Platinum coat color in red fox (Vulpes
  43. vulpes) is caused by a mutation in an autosomal copy
  44. of KIT. Anim. Genet. 46(2): 190-9.
  45. https://doi.org/10.1111/age.12270
  46. Колдаева ЕМ, Колдаев НА (2007) Доместикация и хо-
  47. зяйственно полезные признаки у пушных зверей.
  48. Инф. вестник ВОГиС 11(1): 62–75. [Koldaeva EM, Koldaev
  49. NA (2007) Domestication and economically useful
  50. traits in fur-bearing animals. Inf. VOGiS Bulletin 11(1):
  51. 62–75. (In Russ)].
  52. Yan SQ, Hou JN, Bai CY, Jiang Y, Zhang XJ, Ren HL,
  53. Sun BX, Zhao ZH, Sun JH (2014) A base substitution in
  54. the donor site of intron 12 of KIT gene is responsible for
  55. the dominant white coat colour of blue fox (Alopex lagopus).
  56. Anim. Genet 45(2): 293-6.
  57. https://doi.org/10.1111/age.12105
  58. Шумилина НН, Чекалова ТМ, Митрофанова МВ
  59. (2007) Особенности качества опушения у цветных
  60. форм лисиц (Vulpes vulpes) Инф. вестник ВОГиС.
  61. 11(1): 131–138.
  62. Беляев ДК, Трут ЛН, Рувинский АО (1973) Генетиче-
  63. ски детерминированная летальность у лисиц и воз-
  64. можности ее преодоления. Генетика 9(9): 71–82.
  65. Ильина ЕД, Соболев АД, Чекалова ТМ, Шумилина НН
  66. (2004) Звероводство. СПб: Изд-во “Лань”. [Ilyina ED,
  67. Sobolev AD, Chekalova TM, Shumilina NN (2004) Animal
  68. husbandry. St. Petersburg: Publishing House “Lan”
  69. (In Russ)].
  70. Nes N, Einarsson EJ, Lohi O, J?rgensen G (1988) Beautiful
  71. Fur Animals – and their Colour Genetics. Glostrup,
  72. Denmark: Scientifur. Publ. 271 p.
  73. Nes N, Lohi O, Olausson A, Hansen H (1983) The genetic
  74. factors for colour types in ranch bred foxes. Acta Agric.
  75. Scand. 33: 273–280.
  76. Swenson B.J, Johnson DR (1996) Spatial and temporal
  77. trends and effects of population size on the frequency of
  78. color phenotypes in the wild red fox (Vulpes vulpes). Canadian
  79. Journal of Zoology 74(9): 1622–1631.
  80. https://doi.org/10.1139/z96-180
  81. Цейликман ВЭ, Лукин АА (2022) Влияние окислитель-
  82. ного стресса на организм человека. Международный
  83. научно-исследовательский журнал 3(117): 206–211.
  84. [Tseylikman VE, Lukin AA (2022) The effect of oxidative
  85. stress on the human body. International Research Journal
  86. 3(117): 206–211. (In Russ)].
  87. https://doi.org/10.23670/IRJ.2022.117.3.037
  88. Rani V, Deep G, Singh RK, Palle K, Yadav UC (2016) Oxidative
  89. stress and metabolic disorders: Pathogenesis and
  90. therapeutic strategies. Life Sci 148: 183–193.
  91. https://doi.org/10.1016/j.lfs.2016.02.002
  92. Chaudhary P, Janmeda P, Docea AO, Yeskaliyeva B,
  93. Abdull Razis AF, Modu B, Calina D, Sharifi-Rad J (2023)
  94. Oxidative stress, free radicals and antioxidants: potential
  95. crosstalk in the pathophysiology of human diseases.
  96. Front. Chem 11: 1–24.
  97. https://doi.org/10.3389/fchem.2023.00001
  98. Берестов ВА (1985) Научные основы звероводства.
  99. Наука. Ленинград. [Berestov VA (1985) Scientific foundations
  100. of fur farming. Nauka. Leningrad. (In Russ)].
  101. Колдаева ЕМ, Милованов ЛВ, Трапезов ОВ (2003) По-
  102. роды пушных зверей и кроликов. КолосС. Москва.
  103. [Koldaeva EM, Milovanov LV, Trapezov OV (2003) Breeds
  104. of fur-bearing animals and rabbits. KolosS. Moscow.
  105. (In Russ)].
  106. Балакирев НА, Перельдик ДН, Домский ИА (2013) Со-
  107. держание, кормление и болезни клеточных пуш-
  108. ных зверей. Издательство “Лань”. Санкт-Петербург
  109. [Balakirev NA, Pereldik DN, Domsky IA (2013) Maintenance,
  110. feeding and diseases of caged fur-bearing animals.
  111. Lan Publishing House. St. Petersburg (In Russ)].
  112. ISBN 978-5-8114-1506-9. EDN ROJTQT.
  113. Кондрахин ИП, Курилов НВ, Малахов АГ (2004) Кли-
  114. ническая лабораторная диагностика в ветеринарии:
  115. справочник. Агропромиздат. Москва. [Kondrakhin IP,
  116. Kurilov NV, Malakhov AG (2004) Clinical laboratory diagnostics
  117. in veterinary medicine: a reference book. Agropromizdat.
  118. Moscow. (In Russ)].
  119. Королюк МА, Иванова ЛИ, Майорова ИГ, Токарев ВЕ
  120. (1988) Метод определения активности каталазы.
  121. Лабораторное дело 1: 16–19. [Koroliuk MA, Ivanova LI,
  122. Mayorova IG, Tokarev VE (1988) Method for determination
  123. of catalase activity. Laboratory Work 1: 16–19.
  124. (In Russ)].
  125. Камышников ВС, Волотовская ОА, Ходюкова АБ (2016)
  126. Методы клинических лабораторных исследований.
  127. МЕДпресс-информ. Москва. [Kamyshnikov VS, Volotovskaya
  128. OA, Khodyukova AB (2016) Clinical laboratory research
  129. methods. MEDpress-inform. Moscow. (In Russ)].
  130. Ивантер ЭВ (2005) Элементарная биометрия. Петр-
  131. ГУ. Петрозаводск. [Ivanter EV (2005) Elementary biometrics.
  132. PetrSU. Petrozavodsk. (In Russ)].
  133. Наумова ВВ, Земцова ЕС (2009) Особенности медлен-
  134. ных колебаний гемодинамики у мужчин и женщин.
  135. Физиология человека 35(5): 47–53. [Naumova VV,
  136. Zemtsova ES (2009) Features of slow hemodynamic fluctuations
  137. in men and women. Human Physiology 35(5):
  138. 47–53. (In Russ)].
  139. Беспятых ОЮ, Домский ИА, Бельтюкова ЗН, Коко-
  140. рина АЕ, Тебенькова ТВ (2012) Состояние антиокси-
  141. дантной и иммунной системы у лисиц и песцов в
  142. поствакцинальный период при добавлении в корм
  143. янтарной кислоты. Сельскохозяйственная биология
  144. 47(2): 106–112. [Bespyatykh OYu, Domsky IA, Beltyukova
  145. ZN, Kokorina AE, Tebenkova TV (2012) Status of the
  146. antioxidant and immune systems in foxes and arctic foxes
  147. during the post-vaccination period with the addition of
  148. succinic acid to the diet. Agricultural Biology 47(2): 106–
  149. 112. (In Russ)].
  150. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2012.2.106rus
  151. Esani MA (2014) The physiological sources of, clinical
  152. significance of, and laboratory-testing methods for determining
  153. enzyme levels. Lab Medicine 45(1): e16-e18.
  154. https://doi.org/10.1309/LMBR83WM3GNJEDLS
  155. Берестов ВА (2005) Клиническая биохимия пушных
  156. зверей. Карелия. Петрозаводск. [Berestov VA (2005)
  157. ЖУРНАЛ ЭВОЛЮЦИОННОЙ БИОХИМИИ И ФИЗИОЛОГИИ том 61 № 3 2025
  158. ВОЗРАСТНАЯ ДИНАМИКА БИОХИМИЧЕСКОГО ПРОФИЛЯ САМЦОВ И САМОК ПОМЕСЕЙ... 189
  159. Clinical biochemistry of fur-bearing animals. Karelia.
  160. Petrozavodsk. (In Russ)].
  161. Bowers GN, Mc Comb RB (1975). Measurement of total
  162. alkaline phosphatase activity in human serum. Clinical
  163. Chemistry 21(13): 1988–1995.
  164. https://doi.org/10.1093/clinchem/21.13.1988
  165. Малинина ЕИ Мазалова МВ (2020) Щелочная
  166. фосфатаза в практике врача-невролога (обзор)-Аlkaline
  167. phosphatase in neurological practice (review).
  168. Медицинский альманах 4(65): 21–27.
  169. Swanson KS, Kuzmuk KN, Schook LB, Fahey GC (2004)
  170. Diet affects nutrient digestibility, hematology, and serum
  171. chemistry of senior and weanling dogs. J Anim Sci.
  172. 82: 1713–1724.
  173. https://doi.org/10.2527/2004.8261713x
  174. Veronesi MC, Fusi J (2022) Feline neonatology: From
  175. birth to commencement of weaning – what to know for
  176. successful management. J Feline Med Surg. 24(3): 232–
  177. 242. doi: 10.1177/1098612X221079709. PMID: 35209772;
  178. PMCID: PMC10845399.
  179. Olausson H, Goldberg GR, Laskey MA, Schoenmakers
  180. I,
  181. Jarjou LM, Prentice A (2012) Calcium Salama OS,
  182. Al-Tonbary YA, Shahin RA, Sharaf Eldeen ОА (2006)
  183. Unbalanced bone turnover in children with ?-thalassemia.
  184. Hematology 11(3): 197–202.
  185. https://doi.org/10.1080/10245330600702851
  186. Olausson H, Goldberg GR, Laskey MA, Schoenmakers I,
  187. Jarjou LM, Prentice A. Calcium economy in human pregnancy
  188. and lactation. Nutr Res Rev. 2012 Jun; 25(1): 40–
  189. 67. doi: 10.1017/S0954422411000187. PMID: 22894942.
  190. Inoue H, Clifford DL, Vickers TW, Coonan TJ, Garcelon
  191. DK, Borjesson DL (2012) Biochemical and hematologic
  192. reference intervals for the endangered island fox (Urocyon
  193. littoralis). J Wildl Dis 48(3): 583–592.
  194. https://doi.org/10.7589/0090-3558-48.3.583
  195. Kashani K, Rosner H, Ostermann M (2020) Creatinine:
  196. From physiology to clinical application. European Journal
  197. of Internal Medicine 72: 9–14.
  198. https://doi.org/10.1016/j.ejim.2019.10.025
  199. Zhan Y.-M, Yasuda J, Too K (2003) Reference data on the
  200. anatomy and serum biochemistry of the silver fox. Laboratory
  201. animals 37(1): 54–62.
  202. https://doi.org/10.1258/002367703321610870
  203. Negro M, Avanzato I, D'Antona G (2019). Creatine in
  204. Skeletal Muscle Physiology. 10.1016/B978-0-12-812491-
  205. 8.00008-4.
  206. Березина ЮА, Беспятых ОЮ, Кокорина АЕ (2019) Из-
  207. менение биохимического профиля крови серебри-
  208. сто-черной лисицы в постнатальном онтогенезе.
  209. Известия НВ АУК 3(55): 252–258. [Berezina YuA, Bespyatykh
  210. OYu, Kokorina AE (2019) Changes in the blood
  211. biochemical profile of the silver-black fox in postnatal
  212. ontogenesis. Proceedings of the Northwest Agricultural
  213. University 3(55): 252–258. (In Russ)].
  214. https://doi.org/10.32786/2071-9485-2019-03-32
  215. Булгакова СВ, Тренева ЕВ, Захарова НО, Горелик СГ
  216. (2019) Старение и гормон роста: предположения и
  217. факты (обзор литературы). Клиническая лабора-
  218. торная диагностика 64(12). [Bulgakova SV, Treneva EV,
  219. Zakharova NO, Gorelik SG (2019) Aging and growth hormone:
  220. assumptions and facts (literature review). Clinical
  221. Laboratory Diagnostics 64(12). (In Russ)].
  222. http://dx.doi.org/10.18821/0869-2084-2019-64-12-708-715
  223. Bartke A. Growth hormone and aging. Rev Endocr Metab
  224. Disord. 2021 Mar;22(1): 71–80. doi: 10.1007/s11154-020-
  225. 09593-2. Epub 2020 Oct 1. PMID: 33001358.
  226. Lescano J, Quevedo M, Villalobos M, Gavidia C, (2018).
  227. Hematology and serum biochemistry of free?ranging and
  228. captive Sechuran foxes (Lycalopex sechurae). Veterinary
  229. Clinical Pathology. 47.
  230. https://doi.org/10.1111/vcp.12568.
  231. Окулова ИИ, Березина ЮА, Сюткина АС, Плотни-
  232. ков ИА, Беспятых ОЮ, Домский ИА (2024) Биохи-
  233. мические показатели крови у самок и самцов лисиц
  234. платинового окраса в онтогенезе. Ветеринария се-
  235. годня 13(3): 292–297. [Okulova II, Berezina YuA, Syutkina
  236. AS, Plotnikov IA, Bespyatykh OYu, Domsky IA (2024)
  237. Biochemical Indicators of Blood in Female and Male
  238. Platinum Foxes During Ontogenesis. Veterinary Medicine
  239. Today].
  240. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2024-13-3-292-297
  241. Берестов ВА (1987) Справочник по звероводству в
  242. вопросах и ответах. Петрозаводск: Карелия. [Berestov
  243. VA (1987) Handbook on fur farming in questions and
  244. answers. Petrozavodsk: Karelia. (In Russ)].
  245. Березина ЮА, Кошурникова МА, Домский ИА, Беспя-
  246. тых ОЮ (2020) Динамика биохимических показа-
  247. телей крови красной лисицы (Vulpes Vulpes L.) в
  248. онтогенезе. Иппология и ветеринария 2(36): 177–181. –
  249. EDN ZZGYMM.
  250. Kurutas EB (2015) The importance of antioxidants which
  251. play the role in cellular response against oxidative/nitrosative
  252. stress: current state. Nutr J 15, 71
  253. https://doi.org/10.1186/s12937-016-0186-5
  254. Mandelker L (2011). Oxidative Stress, Free Radicals, and
  255. Cellular Damage. 10.1007/978-1-61779-071-3_1.
  256. Pizzino G, Irrera N, Cucinotta M, Pallio G, Mannino F, Arcoraci
  257. V, Squadrito F, Altavilla D, Bitto A (2017) Oxidative
  258. Stress: Harms and Benefits for Human Health. Oxid Med
  259. Cell Longev 2017:8416763.
  260. https://doi.org/10.1155/2017/8416763
  261. Alkadi H (2020) A Review on Free Radicals and Antioxidants.
  262. Infectious Disorders – Drug Targets 20(1): 16–26.
  263. https://doi.org/10.2174/1871526518666180628124323
  264. Di Meo S, Venditti P (2020) Evolution of the Knowledge of
  265. Free Radicals and Other Oxidants. Oxid Med Cell Longev
  266. 2020:9829176.
  267. https://doi.org/10.1155/2020/9829176
  268. Yadav A., Kumari R., Yadav A., Mishra J.P., Srivatva S.,
  269. Prabha S (2016) Antioxidants and its functions in human
  270. body – A Review. Research in Environment and Life Sciences
  271. 9(11): 1328–1331.
  272. Halliwell B (1996) Antioxidants: the basics-what they are
  273. and how to evaluate them. Adv Pharmacol 38: 3–20.
  274. https://doi.org/10.1016/s1054-3589(08)60976-x
  275. Silvestrini A, Meucci E, Ricerca BM, Mancini A (2023) Total
  276. Antioxidant Capacity: Biochemical Aspects and Clinical
  277. Significance. Int J Mol Sci 24(13):10978.
  278. https://doi.org/10.3390/ijms241310978.]
  279. ЖУРНАЛ ЭВОЛЮЦИОННОЙ БИОХИМИИ И ФИЗИОЛОГИИ том 61 № 3 2025
  280. 190 БЕРЕЗИНА и др.
  281. Diniz BS, Mendes-Silva AP, Silva LB, Bertola L, Vieira
  282. MC, Ferreira JD, Nicolau M, Bristot G, da Rosa ED,
  283. Teixeira AL (2018) Oxidative stress markers imbalance in
  284. late-life depression. J. Psychiatr. Res 102: 29–33.
  285. https://doi.org/10.1016/j.jpsychires.2018.02.023
  286. Kohen R, Nyska A (2002) Oxidation of biological systems: oxidative
  287. stress phenomena, antioxidants, redox reactions, and
  288. methods for their quantification. Toxicol Pathol 30: 620-50.
  289. https://doi.org/10.1080/01926230290166724
  290. Aruoma OI (1998) Free radicals, oxidative stress, and antioxidants
  291. in human health and disease Jurnal Ilmiah Kedokteran
  292. Wijaya Kusuma JAOCS, Journal of the American
  293. Oil Chemists' Society 75(2): 199–212.
  294. https://doi.org/10.1007/s11746-998-0032-9
  295. Лысенко ВИ (2020) Оксидативный стресс как неспец-
  296. ифический фактор патогенеза органных поврежде-
  297. ний (обзор литературы и собственных исследова-
  298. ний). Медицина невідкладних станів 16(1): 24–35.
  299. [Lysenko VI (2020) Oxidative stress as a nonspecific factor
  300. in the pathogenesis of organ damage (review of literature
  301. and own research). Medicine of non-profit organizations
  302. 16(1): 24–35. (In Russ)].
  303. https://doi.org/10.22141/2224-0586.16.1.2020.196926
  304. Leff JA, Oppegard MA, Terada LS, McCarty EC, Repine
  305. JE (1991) Human serum catalase decreases endothelial
  306. cell injury from hydrogen peroxide. J Appl Physiol 71(5):
  307. 1903-6.
  308. https://doi.org/10.1152/jappl.1991.71.5.1903

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025